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レーンより上に出るバンド トピック削除
No.3533-TOPIC - 2010/11/16 (火) 19:52:48 - aso
in vitro転写の確認のために、サンプルを電気泳動すると、目的のサイズにバンドはなく、代わりにレーンより上流に明るいバンドが見られます。
ラボのメンバーに聞いてもこのバンドが何なのか分かりません。
以前はin vitro転写も電気泳動もうまく行っていたのですが、最近はこのようなパターンばかりです。
ーーーーー
「フォト蔵」に写真を載せました。説明が分かりやすくなると思いますので、ご覧くださると助かります。
http://photozou.jp/photo/show/1118073/57119184
ーーーーー
in vitro転写(あるいは電気泳動)がうまくいかない理由にこのバンド(赤の矢印)が関係しているのか、気になっております。
どなたか、原因の検討がつく方おりましたら教えてください。
ちなみにin vitro転写以外ではRNAを取り扱うことはほとんどないです。
転写の条件はT7ポリメラーゼ、目的のサイズは190nt、ビオチンUを取り込ませています。DIGではありません。
電気泳動の条件は、MOPS、1.5%アガロース、脱イオンホルムアミド、サンプルはDNase処理済み、マーカーは少し分解気味ですが、使うことにしています。
 
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うまくいきました 削除/引用
No.3533-9 - 2010/11/17 (水) 13:00:38 - aso
お騒がせしてすみません。トピ主のasoです。
今朝、同僚から「僕がやったin vitro転写はうまくいったよ」と報告いただいたので、急いで、彼が作ったゲルの空いているレーンを借りて、昨日と全く同じサンプルを流しました。
すると、うまく行きました!
単に、電気泳動のボリュームを2マイクロリットルから10マイクロリットルに増やしました。

ーーーーー
フォト蔵に載せた写真はこちらです。
http://photozou.jp/photo/show/1118073/57188513
ーーーーー

これまで:
サンプルを1マイクロリットル、ローディングバッファー1マイクロリットル入れて、合計2マイクロリットルをアプライしていました。

今朝:
サンプルを1マイクロリットル、ローディングバッファー5マイクロリットル入れて、水を4マイクロリットル、合計10マイクロリットルをアプライしました。

ローディングバッファーはX2です。
少し前、うまくいかなくなる前の電気泳動までは、合計2マイクロリットルをアプライしても、RNAのバンドは出ていました。
ごく最近の、うまくいかなくなったのは、なにか微妙な違い、技術的、反応系、の組み合わせかもしれません。
ちなみに、バンドがアーチ型になってしまって、ラボのメンバーには「なんで?」と言われちゃいましたが・・・わかりません。

上述の通りです。みなさま、お世話になりました。
お騒がせして申し訳ありません。

ありがとうございます。 解決済み 削除/引用
No.3533-8 - 2010/11/17 (水) 11:35:21 - aso
みなさん、早々のレスを誠にありがとうございます。
全てのレスを熟読させていただきました。大変、ありがたく感じています。
Pumpkinさんの経験に基づいたご指摘が今回の現象と一致していると考えています。

>転写産物が出来ていないときはエチブロがフリーになっていて、よく観察できるようになった。

大変、参考になります。アドバイスの通り次回はエチブロの量を少なくしてみます。
「レーンより上流にバンド」が出るようなことは、ラボのメンバーはこれまで見たことなかったそうで、うまくいかない理由をいくつも考えてしまい困っていました。
こちらに相談して、どうやらin vitro転写がうまくいっていないようだということは分かり、とても助かりました。

実験がうまくいっているラボのメンバー達によると、in vitro転写では鋳型となるDNAの精度が鍵である・・・そうで、私のサンプルの状態が悪いと予想はつけています。
精製、転写、電気泳動による確認まで、ラボ内で共通の試薬(キット、泳動バッファー、T7ポリメラーゼ、基質、など)を使っています。
異なるのはサンプルそのものだけ(と思う)ですが、他のメンバーは電気泳動のパターンもきれいに出ていて、改善点が見つけずにいられます。
プロモータの配列、鋳型となる領域の塩基配列、制限酵素の認識配列についても確認済みです。
また、DNA濃度についてもチェックはしているのですが、他にも何か見落としがあるのかもしれません。
だらだら書いてしまいましたが、in vitro転写について文章でご相談することが難しいような気がしてきました。

「レーンより上流にバンド」について、納得のいくお答えをちょうだいできましたので、こちらのトピは解決済みとさせていただきます。
重ね重ねになりますが、みなさん、レスをありがとうございました。
また、他の悩める研究職の方にとって、このトピが参考になると幸いです。

(無題) 削除/引用
No.3533-7 - 2010/11/17 (水) 07:46:34 - Pumpkin
>転写が上手くいっていない結果でしょう。

よく考えたらこれは言いすぎでした。訂正します。
電気泳動の結果から転写産物が出来ていないのは分かるとして、フリーのエチブロがあるからと言って転写産物が出来ていないとは判定できませんね。現に、マーカーは染まっていてもエチブロはみえているから。エチブロの量はもっと落とせるでしょう。

(無題) 削除/引用
No.3533-6 - 2010/11/17 (水) 07:23:23 - Pumpkin
みなさんの言うとおり、トピ主さんのloading bufferにエチブロが入っているのだと思います。私もNorthernする時のtotal RNAの電気泳動で、この現象をみます。失敗談ですが(Northernはうまくできたけど)、loading bufferにエチブロを入れすぎた時、電気泳動中に上っていくエチブロのバンドが(励起なしで)肉眼で見えました。

(プロトコルが変わっていないのであれば)転写が上手くいって産物が出来ていた時はエチブロが結合するので、あまり気になっていなかったが、転写産物が出来ていないときはエチブロがフリーになっていて、よく観察できるようになったということではないでしょうか。いづれにせよ、転写が上手くいっていない結果でしょう。どうでしょうか。

(無題) 削除/引用
No.3533-5 - 2010/11/16 (火) 22:04:21 - Actias
エチブロに一票。
泳動用のサンプルバッファにエチブロが入ってませんか?(って前の方と同じ)
エチブロは核酸とは逆に流れていきます。

(無題) 削除/引用
No.3533-4 - 2010/11/16 (火) 21:17:11 - あかね
Loading dyeにEtBrなどの染色試薬をいれてませんか?
サンプルに含まれるdyeが逆に流れたようにみえるけど。

ザンギさんと同じ発想かな。

(無題) 削除/引用
No.3533-3 - 2010/11/16 (火) 20:53:16 - 宗
マーカーのレーンにもそのバンドは見えてるんでしょうか?
写真だと光の加減なのかいまいち分かりません・・・

(無題) 削除/引用
No.3533-2 - 2010/11/16 (火) 19:57:20 - ザンギ
ゲルの染色はどうしてますか。

レーンより上に出るバンド 削除/引用
No.3533-1 - 2010/11/16 (火) 19:52:48 - aso
in vitro転写の確認のために、サンプルを電気泳動すると、目的のサイズにバンドはなく、代わりにレーンより上流に明るいバンドが見られます。
ラボのメンバーに聞いてもこのバンドが何なのか分かりません。
以前はin vitro転写も電気泳動もうまく行っていたのですが、最近はこのようなパターンばかりです。
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「フォト蔵」に写真を載せました。説明が分かりやすくなると思いますので、ご覧くださると助かります。
http://photozou.jp/photo/show/1118073/57119184
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in vitro転写(あるいは電気泳動)がうまくいかない理由にこのバンド(赤の矢印)が関係しているのか、気になっております。
どなたか、原因の検討がつく方おりましたら教えてください。
ちなみにin vitro転写以外ではRNAを取り扱うことはほとんどないです。
転写の条件はT7ポリメラーゼ、目的のサイズは190nt、ビオチンUを取り込ませています。DIGではありません。
電気泳動の条件は、MOPS、1.5%アガロース、脱イオンホルムアミド、サンプルはDNase処理済み、マーカーは少し分解気味ですが、使うことにしています。

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