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5'プライマーと3'プライマー トピック削除
No.2462-TOPIC - 2010/04/26 (月) 04:59:47 - いも
こちらのフォーラムでは、様々なトピックスに関して
色々と学ばせて頂いています。

大変初歩的な質問かもしれないのですが、
経験豊富な皆様のご意見が頂けたらと思います。


ただ今、600〜800bp位のPCR産物のシークエンシング
(ABIのgenetic analyzer使用)を行っています。
50ほどあるサンプルのシークエンスをPCRで増幅し、
同じPCR産物を用いて、それぞれ5'プライマーと3'プライマーを用いて
計100(50×2)程ののデータを得ています。

PCR産物精製後、精製されたDNAサンプルをシークセンサーに掛けています。
5'プライマーでは全てのサンプルから綺麗なクロマトグラムが見られるのに、
3'プライマーでは全てのサンプルに全く同じ様なノイズが入ります。
二つのサンプルの違いはプライマーだけです。

この様なことが起こるのは
「3'プライマーが何らかの理由で変質してしまった」
が理由なのでしょうか?
新しく3'プライマーのみ注文しなおして
シークエンシングをし直そうか考えています。


全く稚拙な文章で申し訳ありませんが、
皆様のご意見が頂けたらと思います。
よろしくお願いいたします。
 
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ありがとうございます 解決済み 削除/引用
No.2462-3 - 2010/04/29 (木) 18:10:21 - いも
プラ今さま。

お返事送れて申し訳ありません。
アドバイスありがとうございます。

>「ダイマー産物が混入している場合、
>ゲル抽などで目的のバンドを精製すれば解決する」
なるほど、研究室内でも
(ゲル上では見ることが出来ないのですが)、
ダイマー産物の可能性を検討しています。


もう少し色々調べなおし手みたいと思います。
ありがとうございました。

(無題) 削除/引用
No.2462-2 - 2010/04/26 (月) 09:44:37 - プラ今
「3'プライマーが何らかの理由で変質してしまった」可能性はないとは言いきれませんが、低いでしょう。

ありがちなのは、鋳型PCR産物に、3’プライマーがミスアニールする共通の配列がある場合です。その配列と、オリゴDNA配列の類似性にもよりますが、シーケンス反応のアニーリング温度を高めに設定することで回避できるかもしれません。

もしくは、3’プライマーだけで増幅する遺伝子産物や3’ダイマー産物が混入している可能性です。この場合は、ゲル抽などで目的のバンドを精製すれば解決できます。

いずれも、3’プライマーを別の配列で設計し直すことで解決できる場合もあります。

これ以外のレアケースも多々ありますが、実験の詳細や、元の生データがわからないとかえってミスリードすることにもなりかねませんので控えさせて頂きます。

5'プライマーと3'プライマー 削除/引用
No.2462-1 - 2010/04/26 (月) 04:59:47 - いも
こちらのフォーラムでは、様々なトピックスに関して
色々と学ばせて頂いています。

大変初歩的な質問かもしれないのですが、
経験豊富な皆様のご意見が頂けたらと思います。


ただ今、600〜800bp位のPCR産物のシークエンシング
(ABIのgenetic analyzer使用)を行っています。
50ほどあるサンプルのシークエンスをPCRで増幅し、
同じPCR産物を用いて、それぞれ5'プライマーと3'プライマーを用いて
計100(50×2)程ののデータを得ています。

PCR産物精製後、精製されたDNAサンプルをシークセンサーに掛けています。
5'プライマーでは全てのサンプルから綺麗なクロマトグラムが見られるのに、
3'プライマーでは全てのサンプルに全く同じ様なノイズが入ります。
二つのサンプルの違いはプライマーだけです。

この様なことが起こるのは
「3'プライマーが何らかの理由で変質してしまった」
が理由なのでしょうか?
新しく3'プライマーのみ注文しなおして
シークエンシングをし直そうか考えています。


全く稚拙な文章で申し訳ありませんが、
皆様のご意見が頂けたらと思います。
よろしくお願いいたします。

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