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(無題) 削除/引用 No.1697-8 - 2009/12/08 (火) 09:46:35 - humc スクロースで色素なしを自作しました。 泳動は分子量マーカーで確認し、良好なバンドが得られました。 ただ、アプライが透明で慣れないので最初はやりにくかったです。 みなさんありがとうございました。

ありがとうございます。 削除/引用 No.1697-7 - 2009/12/08 (火) 02:06:02 - humc やってみます。

(無題) 削除/引用 No.1697-6 - 2009/12/06 (日) 18:02:48 - pa サザンブロットもありですね。

(無題) 削除/引用 No.1697-5 - 2009/12/06 (日) 17:57:34 - み Wako Nippon geneの6xLoading buffer OrangeG　 Cat NO. 317-90251ですね。 XCもBPBも入ってなくて、泳動先端部分にオレンジ色の色素が流れるから良いですよ。安くて愛用しています。

(無題) 削除/引用 No.1697-4 - 2009/12/06 (日) 13:31:17 - 通りすがり 作るのが面倒ならばニッポンジーン社からＢＰＢなしのバッファーが販売されていたと記憶しています。

(無題) 削除/引用 No.1697-3 - 2009/12/06 (日) 11:15:18 - TK−１ XCだけが入ったloading bufferを作れば済むことです。５分もかからないと思います。

(無題) 削除/引用 No.1697-2 - 2009/12/06 (日) 08:58:05 - おお もしいまゲルにある状態のもので解析したいのなら、 エチブロ入りのTEとかにつけてゲルが壊れない程度で 15ー20分程度シェイクすると、BPBとかは拡散していきますので ましになると思います。シェイク長すぎるとバンドも拡散していきますけどね。 もう一度流せるようなら、BPB抜いた物をつかうか、 色素の薄いものをよういしましょう。

アガロース　バンドとBPBが重なり分析できない。 削除/引用 No.1697-1 - 2009/12/06 (日) 08:38:15 - humc アガロースゲル電気泳動でpcr産物を分析したのですが，バンドがbpb色素とほとんど同じ位置に出てきて黒抜けして分析できません．どうしたらよいでしょうか？脱色とかできますか？

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