お世話になります。
現在、レンチウィルスでES細胞にshRNAを入れて、
標的遺伝子をノックダウンしております。
ベクターはSigmaのpLKO.1-puroを改編し、puromycin耐性遺伝子の代わりに
GFPを入れたものを使っております。
問題は、標的遺伝子のmRNAの発現が低下する場合と低下しない場合があり、
困っております。(実験はFACSでGFP陽性細胞と陰性細胞をソートしてきて
行いました。)うまく低下した場合、ある細胞の数が劇的に減少する
ことが観察されているため、標的遺伝子はその細胞の数を
コントロールしていると考えています。
このベクターではshRNAの発現はU6プロモーターで、
GFPはPGKプロモーターでコントロールされています。
ES細胞ではU6プロモーターはDNAのメチル化により不活性化されるとの
報告もあり、実験条件によってはshRNA自体が発現していない場合があると
考えています。
そのため、PGKプロモーターとU6プロモーターの活性が
実験間で差が違っているのではないかと思っています。
そこで、標的遺伝子のmRNAの発現が低下した場合としない場合で、
shRNAの発現がどうなっているのかを知りたいと考えております。
そこで質問なのですが、
shRNAの発現をリアルタイムPCRで検出することは可能なのでしょうか?
また、miRNAを検出するのと同じ原理で検出することは可能なのでしょうか?
以上、長文となりましたが、何卒よろしくお願いいたします。 |
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