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(無題) 削除/引用 No.5916-5 - 2017/04/19 (水) 10:52:56 - hana それは先端だけPPとかのものを使用するのは不可なタイプをご利用ということでしょうか？

(無題) 削除/引用 No.5916-4 - 2017/04/18 (火) 20:46:40 - おお あなたの実験でどの程度のクロスコンタミがゆるせるのか考えてみてください。 DNAやRNAで１コピー混ざることがどれくらい実験にインパクトがあるか。 蛋白がどの程度前のものが持ち込まれていれば、検出した量が反映されていないのか。 ポリトロンなら外さずに、ある程度の量のバッファーか水をホモゲナイズして洗って次のサンプルを処理するのもありで、上記のことをよく考えならが、何回それをやるのか、水の代わりに何かもっと強力なものを使ったほうがいいのか、その場合洗浄に使ったものの持ち込みがどうなのかなど色々考えるといいかと思います。

(無題) 削除/引用 No.5916-2 - 2017/04/18 (火) 16:23:30 - AP ホモジナイザーと言ってもいろんなタイプがある。いかなるタイプか？（ポリトロン型、ポッターetc.） どんな目的でホモジナイズするのか？（タンパク質精製？　RNA精製etc.) ダウンストリームのアプリケーションは何か？（イミュノブロット、RT-PCR etc.)

ホモジナイザーの使用方法 削除/引用 No.5916-1 - 2017/04/18 (火) 16:18:51 - neuroscience 脳組織のホモジナイズで質問です。 私はラットから脳組織の一部を採取した後、2.0mlチューブに入れて保存します。 そのまま2.0ml内にbufferを入れてホモジナイズをしたいと思っています。 異なるサンプルを連続してホモジナイズする場合、金属シャフトの洗浄はどのようにすればよいのでしょうか。 シャフトを毎回毎回、洗浄した新しいものに変更したいのは山々ですが、高価なシャフトで１本しかありません。 毎回毎回、超音波洗浄機などでシャフトを洗浄して行うには効率が悪いような気もしています。 しかし、単に純粋で水洗いしただけでは、前のサンプル組織がシャフトに付着しているような気がしてなりません。

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