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(無題) 削除/引用 No.4833-9 - 2016/02/10 (水) 20:49:31 - 小言幸兵衛 え？ 解決したの？ 結局何が原因だったの？

(無題) 削除/引用 No.4833-8 - 2016/02/10 (水) 19:34:06 - a 皆さまご指摘どうもありとうございました． 非常に勉強になりました．

(無題) 削除/引用 No.4833-7 - 2016/02/10 (水) 12:30:10 - WoW とりあえず後染め試してみたらどうでせう

(無題) 削除/引用 No.4833-6 - 2016/02/10 (水) 11:44:00 - AP >BPBの蛍光のかぶりを見誤っているとはどういうことでしょうか． 紫外線励起だとトラッキング色素のBPBが光り、位置もちょうどその辺なので、もしやと

(無題) 削除/引用 No.4833-5 - 2016/02/10 (水) 10:49:58 - あ 低分子量の方が先に動くのでGelRedの結合が多く，高分子はその後に動くので結合するGelRedの量が少ない． もしくは 低分子量はバンドがぼやけて太く，高分子はバンドがぼやけずに細い，露光時間が長くどちらも輝度が飽和しており，バンドが太い方が輝いて見える． かな

(無題) 削除/引用 No.4833-4 - 2016/02/09 (火) 23:52:01 - a AP様 ゲルを作製する際にEtBrではなくGelRedを加えています． 後染めではありません． BPBの蛍光のかぶりを見誤っているとはどういうことでしょうか．

(無題) 削除/引用 No.4833-3 - 2016/02/09 (火) 23:24:49 - AP 染色方法は？ ゲルにEtBr? 後染め? BPBの蛍光のかぶりを見誤っていない？

(無題) 削除/引用 No.4833-2 - 2016/02/09 (火) 22:50:01 - 中年 ヌクレアーゼがコンタミしてデグってるとか？ 10mMもEDTAが入ってるからちょっと考えにくいところですが。

ラダーワンについて 削除/引用 No.4833-1 - 2016/02/09 (火) 22:46:04 - a 現在，アガロースゲル電気泳動で ナカライテスクの1kbpDNAラダーワンを使用しています． 説明書をみると，1kbpと3kbpがDNAの量が多く観察した時に一番光ると記載されているのですが，実際電気泳動の画像を見てみますと，下の方のバンド（0.3kbp，0.5kbp）が一番光っています． なぜこのような結果になるのか分からず困っています．何か考えられる原因があるでしょうか ご指摘，ご指導の程よろしくお願いいたします． ※0.7％アガロースゲルを使用し，100v，30minでいつも泳動を行っています．

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