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スライドガラス上の一部に細胞をまきたい 削除/引用 No.3331-14 - 2014/09/06 (土) 12:25:28 - 匿名 皆様 　多数のアイディアを頂きましてありがとうございます。 　普通に細胞懸濁液を盛ってみるのが一番無難かもしれませんね。色々と試してみたいと思います。 　大変助かりました！

(無題) 削除/引用 No.3331-13 - 2014/09/05 (金) 17:54:44 - が http://www.n-genetics.com/product_detail.html?item_id=4536 よく使っています。

(無題) 削除/引用 No.3331-12 - 2014/09/05 (金) 16:36:48 - 名無し http://www.gcdental.co.jp/sys/data/item/106/　 確か、このユーティリティワックスっていうのがクレヨンみたいに使えます。 家で使っている接着細胞では細胞毒性を示しませんでした。

(無題) 削除/引用 No.3331-11 - 2014/09/04 (木) 15:16:56 - ぽ 同じくですが、ごく少量5-10μの懸濁液を盛るような感じでdisc上において、接着するまで（細胞に拠りますが30分もみればいいような）静置し、その後培地を加えていますが、うまくできています。少量でもしっかり湿度が保たれていれば、そうそう乾かないかとおもいます。

(無題) 削除/引用 No.3331-10 - 2014/08/31 (日) 00:09:44 - おお あhanging dropだと細胞が表面につかないか、、、

(無題) 削除/引用 No.3331-9 - 2014/08/31 (日) 00:07:50 - おお http://www.google.com/search?q=hanging+drops+cells&client=safari&rls=en&hl=en&prmd=ivns&source=lnms&tbm=isch&sa=X&ei=QugBVKCHGpSQNp-ogtgI&ved=0CAUQ_AU hanging dropsというのも手かもしれません。

(無題) 削除/引用 No.3331-8 - 2014/08/30 (土) 16:15:38 - qw 乾燥させたコート済みカバースリップをdishに入れ、細胞懸濁液を5ul程度をカバースリップの中心に盛って、乾かさないようCO2インキュベータ内で細胞が軽く接着するまで（15分程度）放置します。その後、適量の培地を更に加えて、カバースリップ全体を培地中に沈めます。意外に上手くいきますよ。

(無題) 削除/引用 No.3331-7 - 2014/08/30 (土) 15:33:16 - toto ダコペン等だと、いろいろと試してみましたが、どれも細胞が死んでだめでした。一番古典的で簡単なのは、ワセリンだと思います。品質の良い白色ワセリン（ネットで普通に売られてるもの）をオートクレーブして、チップの先につけて線を引けばカバーグラスの上にでも区画を作れます。よく使ってます。細胞毒性は殆ど出ない印象ですが、ただ、影響が全くないのかどうかはわかりません。

(無題) 削除/引用 No.3331-5 - 2014/08/30 (土) 14:33:19 - よっしー 何度も使い回しができて安上がりです． http://www.greiner-bio-one.co.jp/products/233.html

スライドガラス上の一部に細胞をまきたい 削除/引用 No.3331-4 - 2014/08/30 (土) 14:29:39 - 匿名 皆様有難うございます。 ダコペンをもっとしっかり乾かす必要があるかもしれませんね。注意してトライしてみます。 実験機器の都合上、スライドガラスの大きさは決められたものを使用しなければなりません。ですので、やはり一部の領域のみに細胞を培養する手法を探りたいと考えています。 書き忘れましたが、まきたい領域は長方形なので、長方形のクローニングシリンダー（？）があればいいのですが・・・。 他にもアイディアがありましたらよろしくお願いします。

(無題) 削除/引用 No.3331-3 - 2014/08/30 (土) 04:17:12 - 独り言 細胞を節約いたいだけなのなら、24well用の小さな円形カバーガラスを使用すれば、より小さい系になりますし、お金に余裕があるなら8wellのチャンバースライド使えば、もっと小さな系で実験できますよ http://www.thermoscientific.jp/lab-products/plasticware/product.php?id=437

(無題) 削除/引用 No.3331-2 - 2014/08/30 (土) 03:56:52 - 思いつき 小さなカバーグラスを24、48穴などに入れて培養するか、クローニングシリンダーを用いるか、特注で小さめの穴のスライドグラスを作ってもらうか・・・でしょうか・・・ダコペンの液はよく乾かしても溶けてしまうものなんですかね？

スライドガラス上の一部に細胞をまきたい 削除/引用 No.3331-1 - 2014/08/30 (土) 02:48:21 - 匿名 　いつも拝見しています。よろしくお願いします。 　コラーゲンコート後の円形スライドガラス（12-well-plateの1 well相当の面積）上の「一部」に細胞をまきたいと考えています。実験に使用するエリアが円形スライドガラスのごく一部であり、細胞を節約したいためです。初代培養細胞を使用しており、得られる細胞数が限られています。 　ダコペンで囲った内側にまくことを試みました。ダコペン枠の内側に細胞懸濁液を”盛る”事は出来ましたが、細胞が接着できず死んでしまいました。ダコペンで引いた線と細胞懸濁液が接触すると、溶け出してしまうようです。 　何か良い方法をご存じの方がいらっしゃったら、ぜひ教えて下さい。

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