Bio Technical フォーラム

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導入したプラスミドの安定的な発現 トピック削除
No.13144-TOPIC - 2025/10/16 (木) 13:09:58 - えき
プラスミドを細胞株にトランスフェクションしています。
薬剤による選択を行った場合、このプラスミドの発現は導入後もずっと安定していると考えてよいのでしょうか?
また、みなさんがお使いの試薬でトランスフェクションにおすすめの試薬があれば教えていただけないでしょうか?
よろしくお願いします。
 
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(無題) 削除/引用
No.13144-30 - 2025/10/22 (水) 03:08:28 - KK
私の経験にはなりますが,HeLa とHEK293TでしたらFugeneHDで基本的には問題ないかと思います.
ただFugeneHDでうまくtransfectionできなかったプラスミドもあったのですが,その時にLipofectamin LTX, 3000 でうまく行った経験があります.
プラスミドの量は振っていますでしょうか?企業のプロトコル通りの量をtransfectして細胞死が起こることがあったので,1/1, 1/2, 1/5, 1/10 くらいで比較してみると長期的な安定株の取得ができるかもです.

(無題) 削除/引用
No.13144-29 - 2025/10/21 (火) 07:53:59 - ハチ
トピ主さんそっちのけでいつものメンバーで議論が白熱しているのに、トピ主さんが二度と現れずに終わったトピックを何度か(も?)見て、初学者が萎縮してしまったのかなと思っていました。私の思い過ごしでしたら失礼しました。

(無題) 削除/引用
No.13144-28 - 2025/10/20 (月) 15:00:16 - おお
萎縮というのは私もよく分からなかったところです。こんな感じの質問ができるところで子供が圧倒されてというならあるのかもしれませんが、研究されている方方なので、、、、稀に高校生と名乗る人が来てた事がありましたが。

(無題) 削除/引用
No.13144-27 - 2025/10/20 (月) 12:37:02 - asan
>匿名で委縮するかね。
研究者なのに、萎縮してしまって自分の意見を言えないってどうなのって思うけど。

無料の掲示板だし、誰かが疑問に思うことは他の人も疑問に思うかもしれない、という前提に立てば、感情論に行きすぎない範囲で関連テーマを議論することは別にいいのでは?質問者や個別回答者の知識外の前提があったら話題にできなくなるのは勿体無いし、聞きたいことが無視されてなければいいと個人的には思いますが。

(無題) 削除/引用
No.13144-26 - 2025/10/20 (月) 11:13:03 - ぽいう
プラスアルファの情報が入るからそれもアリと思うけどね。切り分けて読めばいいだけ。
匿名で委縮するかね。

(無題) 削除/引用
No.13144-25 - 2025/10/18 (土) 07:33:34 - ハチ
訂正です。

そうしてしまうメンバーは固定されていますが。いる場合に多いですが。

そうしてしまうメンバーがいる場合に多いですが。

(無題) 削除/引用
No.13144-24 - 2025/10/18 (土) 07:32:28 - ハチ
>複数の人で話し合いをすると普通そういう状況になりませんか?Discussionに慣れてらっしゃらないのでは?

普通かどうかはともかく、そうなる場合もありますね。そうしてしまうメンバーは固定されていますが。いる場合に多いですが。

また質問と関係ない話でも質問者が知らないのであればそれは質問者によっても有用でしょう。
>
> それに必ずしも返答が返ってくると限りませんから、その場合は色々な角度の色々な情報があったほうがいいですし、質問者はそれらの情報をみて本人的には解決している可能性もあります。
>
> また情報という観点では色々な視点のものが書き込まれて残ることがいい情報ソースになると思います。

一般論としてはそういうことはあり得ますが、このフォーラムではしばしば暴走ぎみになって、質問者さんが萎縮してしまっているのではないかと心配しています。こちらの質問者さんはそうではなかったようですが。

(無題) 削除/引用
No.13144-23 - 2025/10/18 (土) 05:42:36 - おお
>[Re:18] えきさんは書きました :
> 多くの皆様にご助言いただき感謝致します。
> 今はこんな感じで進めています。
> ・細胞はHelaを使用しているが、HEK293Tも今後使用予定。
> ・トランスフェクション試薬はFuGENE HDを使用。

HelaやHEK293TならFuGENE HDでかなりいい導入効率が得られると思います(私の経験上)。

(無題) 削除/引用
No.13144-22 - 2025/10/18 (土) 05:38:38 - おお
293T細胞などT antigenが発現する細胞にSV40 oriをもつプラスミドを導入するとトランジェントには複製により細胞内のプラスミドコピー数が爆増し非常に強い発現が見込めます。導入後、薬剤処理を続けた場合、安定導入株が取れます。先に示した文献ではSV40 oriとT antigenの組み合わせは細胞内でのエピソーマルでのプラスミドの維持に好ましくないとされていますが(私の見てきた情報の限りで、うまく維持できるやり方もあるかもしれません)、ゲノムにも取り込まれるのでそれによる発現は維持されるものだと思ってます。しかしその状態であまり良くないことが起こる可能性も指摘されています。たしかInvitrogenの何かの商品のProduct sheetかなにかに、SV40 oriがゲノムにインテグレートされることにより、染色体の不安定化が促進されるので好ましくないと書かれていました。そういう状態では細胞にとって何らかの形で増殖抑制がかかるような遺伝子を導入した場合、ゲノムの不安定化によりそういう好ましくない遺伝子が排除される可能性が考えられます。そうでなくても細胞がどんどん変わっていくと思うとちょっと気持ちが悪いですね。
しかしながら293T細胞にSV40 oriをもつプラスミドを安定導入して実験している報告も見られますので、やったらだめな方法とは言いませんし、そのへんの判断はお任せすることにします。

(無題) 削除/引用
No.13144-21 - 2025/10/18 (土) 04:58:34 - おお
>[Re:20] ハチさんは書きました :
> > まってるのですけどね。
>
> 待ちきれないように憶測に基づいたコメント合戦を控えてはということを申し上げました。
>

色々と情報を加えているだけで、その中で質問者が必要な情報を拾えばいいと私は思ってます。複数の人で話し合いをすると普通そういう状況になりませんか?Discussionに慣れてらっしゃらないのでは?また質問と関係ない話でも質問者が知らないのであればそれは質問者によっても有用でしょう。

それに必ずしも返答が返ってくると限りませんから、その場合は色々な角度の色々な情報があったほうがいいですし、質問者はそれらの情報をみて本人的には解決している可能性もあります。

また情報という観点では色々な視点のものが書き込まれて残ることがいい情報ソースになると思います。

(無題) 削除/引用
No.13144-20 - 2025/10/17 (金) 22:59:35 - ハチ
> まってるのですけどね。

待ちきれないように憶測に基づいたコメント合戦を控えてはということを申し上げました。

(無題) 削除/引用
No.13144-19 - 2025/10/17 (金) 20:40:56 - 774
情報ありがとうございます。一般的な安定発現細胞の樹立ですね。HeLa, 293Tあたりならどの試薬でも大丈夫だと思います。確率を上げようとするなら、目的遺伝子と薬剤耐性遺伝子の発言に影響のないサイトで切断して直鎖状にしておくと、ランダムな直鎖化よりは効率がいいと聞いた覚えがあります。
目的遺伝子が細胞死や増殖抑制を誘導しないという前提ですが、安定発現細胞が取れるかどうかは、前回指摘したような要因で左右されるでしょう。
ちょっと気になるのは293Tはneo耐性なので、G418でのselectionに関しては賛否が分かれるところです。私は避ける派です。

(無題) 削除/引用
No.13144-18 - 2025/10/17 (金) 18:40:02 - えき
多くの皆様にご助言いただき感謝致します。
今はこんな感じで進めています。
・細胞はHelaを使用しているが、HEK293Tも今後使用予定。
・トランスフェクション試薬はFuGENE HDを使用。
・G418でセレクション中。
・細胞内ゲノムに組み込まれる安定的トランスフェクションを目指している。
一過性のKDはこれまでやってきているのですが、長期間〜恒常的な導入はこれが初めてです。
曖昧な表現になり、すみませんでした。

(無題) 削除/引用
No.13144-17 - 2025/10/17 (金) 15:21:55 - ぽいう
質問者が経験的に分かってないため、どう追加コメントすればいいかもわからなくなってるに一票

(無題) 削除/引用
No.13144-16 - 2025/10/17 (金) 09:55:15 - おお
>みなさんがお使いの試薬でトランスフェクションにおすすめの試薬

細胞によるので使う細胞を明記されたほうがいいと思います(できないかもしれませんが)。リポフェクタミン2000とか3000、Fugene HD、4Kなどはよく使うCell lineではほぼOKだと思います。また使用例とその効率などもメーカーがリストにしてたりしますので探してみてください。他にも各社出してますが、あまり使用したことがないので、、、リン酸カルシウムやPEI系は結構細胞を選ぶと思いますが、使っている人も多いかと思います。

(無題) 削除/引用
No.13144-15 - 2025/10/17 (金) 09:47:26 - おお
>[Re:13] ハチさんは書きました :
> トピ主さんの真意をそれぞれに推測してコメント合戦をするより、まずは追加コメントを待ちませんか?(ありがち)

まってるのですけどね。

(無題) 削除/引用
No.13144-14 - 2025/10/17 (金) 09:18:28 - cvbn
今やっている実験の具体的なプロセスと、今どこの段階なのかを明示したほうがいいです。(単に抗生剤でセレクションかけて生き残った細胞を培養してるところなのか、クローニングまでした後なのかなど)それがないと皆さん答えようがないと思うので。

(無題) 削除/引用
No.13144-13 - 2025/10/17 (金) 07:46:11 - ハチ
トピ主さんの真意をそれぞれに推測してコメント合戦をするより、まずは追加コメントを待ちませんか?(ありがち)

(無題) 削除/引用
No.13144-12 - 2025/10/17 (金) 06:53:36 - おお
https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/0165111089900237

SV40 oriとEBV oriPの比較をやってますね。

(無題) 削除/引用
No.13144-11 - 2025/10/17 (金) 01:28:19 - たこ
ものすごく簡単に。
限界希釈なりでクローニングしたものですが、十年以上高発現しているものもあれば、クローニング後にストックするまでの間にどんどん消えていくものもある。
ものによるとしかいえないし、そうとしか思っていない。
774さんのおっしゃるようにインテグレートされる場所なり、サイレンシングがかかりやすいとか、入ったクローンによっても当然違うでしょうから。
あとは導入した遺伝子の機能にもよるし。

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