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ブロッティング装置にて
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No.131-TOPIC - 2012/02/07 (火) 18:58:12 - 英堂
WesternのSDSページで質問があります。
現在、200KDaほどのタンパク質を解析しようとしてるのですが、
アトー社のブロッターでセミドライ法をやってもバンドがうまくでません。
もし、200KDaほどのタンパク質を解析させてる方がおられましたら、
お勧めのブロッティング装置を教えて頂けないでしょうか?
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(無題)
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No.131-10 - 2012/02/08 (水) 12:53:07 - 英堂
なんだか私のいない所で議論されてますが…。
高分子ならタンク式がよさそうですね。
大変参考になりました。
(無題)
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No.131-9 - 2012/02/08 (水) 11:28:29 -
TS
>200Kだからタンク式のほうがいいというのは、どういう理屈でしょう?
>大きな分子はtransferされにくくなるということはありますが
自問自答されているように、そういう理屈です。
高分子はWetのほうが転写効率がよいです。
(無題)
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No.131-8 - 2012/02/08 (水) 09:02:28 - aimar
高分子側のタンパク質はWet式の方が断然転写効率がいいです。
低分子側もほとんど抜けないですし。
semi-dry式は高分子側はゲルに残ります。
某社の技術者も一番いいのはWet式です、と言ってました。
ゲルの電気泳動後洗浄
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No.131-7 - 2012/02/08 (水) 01:10:31 - わ
ゲルは電気泳動後洗浄するものなのですか?今まで(10年間),したことがなく,うまくいっていますが、もし、さらに、効率を高めるステップならば,試すべき価値があると思っています。トランスファーはタンク式でいつもやっています。また、カセットに挟むときに,作業工程上,トランスファーバーッファーに30秒から1分くらい浸っていますが,これが、ゲルの洗浄と考えていいのでしょうか?意見をお聞かせください。
(無題)
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No.131-6 - 2012/02/07 (火) 22:45:54 - 懐疑派
200Kだからタンク式のほうがいいというのは、どういう理屈でしょう?私はあまりそういう傾向は感じたことがありません。電気泳動後のゲルの洗浄時間が長すぎるとSDSが抜けてしまってタンパクが沈殿しやすくなった結果、大きな分子はtransferされにくくなるということはありますが(洗浄時間を短くすればこの場合は解決)、転写方式には関係ないように思いますが。それぞれに至適化さえすれば。
(無題)
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No.131-5 - 2012/02/07 (火) 20:43:24 - 英堂
TS様、ありがとうございます!
キャンペーン中とあって、参考にさせてもらいます。
(無題)
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No.131-4 - 2012/02/07 (火) 20:36:11 -
TS
>ミニトランスブロットセル
すみません、Bioradです。
(無題)
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No.131-3 - 2012/02/07 (火) 19:08:17 -
TS
200kDaだとタンク式がよいでしょう。
パワーサプライが必要なければ、各社から10万円以下で十分買えると思います。
私は、ミニトランスブロットセルを使っています。(ミニゲル用)
いまならキャンペーン中で7〜8万円くらいだと思います。
(無題)
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No.131-2 - 2012/02/07 (火) 19:00:30 - 英堂
補足ですが、あまり高額だと購入できないので、
比較的安価で、できれば10万円をきれば嬉しいです。
ブロッティング装置にて
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No.131-1 - 2012/02/07 (火) 18:58:12 - 英堂
WesternのSDSページで質問があります。
現在、200KDaほどのタンパク質を解析しようとしてるのですが、
アトー社のブロッターでセミドライ法をやってもバンドがうまくでません。
もし、200KDaほどのタンパク質を解析させてる方がおられましたら、
お勧めのブロッティング装置を教えて頂けないでしょうか?
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