普段、マウス脳切片(30µm)をクライオスタットで作成し、スライドガラスに貼り付けた後に染色しています。
今後、抗原賦活化が必要な抗体(Ki67)で染色をする予定なので、賦活化の条件検討を行っています。
これまでに行った賦活化条件は、
@ 70℃で10 min反応 → 30 min 室温(24℃)で冷却
A 70℃で30 min反応 → 30 min 室温(24℃)で冷却
B 100℃で10 min反応 → 30 min 室温(24℃)で冷却
C 100℃で30 min反応 → 30 min 室温(24℃)で冷却
ですが、どれもうまく染色されませんでした。
賦活化の際のバッファーはクエン酸ナトリウムバッファー(pH=6.0)を使用しております。
また、ブロッキング → 賦活化 → 一次抗体(4℃でON)→ 二次抗体(室温で2時間)→ 封入の順番で行っています。
染色されない原因として、何が考えられますでしょうか。
ご教示願います。 |
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