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(無題) 削除/引用 No.1170-4 - 2012/11/20 (火) 12:54:10 - まっくろん 　RAW264細胞（マウスマクロファージ様細胞で同じく接着性が強い）を扱っていたときは，スクレーパーで回収していました。全面を1度優しくなぞることで，回収出来ました。また，PIで染めましたが，この程度であればPI陽性細胞がたくさん出てくるということはありませんでした。使用していたスクレーパーはIWAKIのゴムのやつです。

(無題) 削除/引用 No.1170-3 - 2012/11/19 (月) 23:37:51 - 通りすがり セルスクレーパーで剥がして問題ありません。 やり過ぎると死細胞が増えるので注意してください。 人によってはピペットマンで剥がしてましたが、回収率が下がるんで個人的には好きじゃないです。

(無題) 削除/引用 No.1170-2 - 2012/11/19 (月) 23:02:39 - おお http://www.ipros.jp/product/detail/154900001/ そのような実験ではこれを使っているとは言いませんが、こういうのも選択肢かなと思いました。

細胞分化誘導後のフローサイトメトリー 削除/引用 No.1170-1 - 2012/11/19 (月) 20:02:18 - とんたろう 単球系の細胞（THP-1細胞など）を分化誘導し、分化誘導後に細胞表面レセプターを染色し、フローサイトメトリー解析で発現変化を観察したいと考えています。 しかし、細胞をマクロファージなどに分化誘導させると、セルカルチャーフラスコにかなり強く結合してしまい、なかなか剥離することができません。 論文では、分化誘導後にフローサイトメトリー解析を行っているものはいくつもありますが、細かいテクニックまでは記載されておらず、細胞の処理の仕方に苦戦しています。 どなたか経験のある方がいらっしゃいましたら、教えて頂けないでしょうか？ ちなみに低接着性のフラスコ使用してみましたが、コロニーを形成してしまい、うまく解析ができませんでした。 以上、宜しくお願い致します。

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