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ウェスタンのバンド位置がずれる トピック削除
No.11589-TOPIC - 2023/07/05 (水) 09:52:05 - rura
ある目的タンパク(16kDa)があるのですが、市販の抗体の添付画像には25kDaにバンドが現れています。
実際に細胞株でウェスタンを行うと25kDaにバンドが現れます。
しかし、同タンパク遺伝子をトランスフェクションして過剰発現させた細胞でウェスタン行うと16kDaに過剰発現されたバンドが現れます。
このずれは何によって起こるのでしょうか。
グリコシル化についてはPNGaseFにて確認しましたがあまりバンド位置は変わりませんでした。
低分子タンパクであれば修飾によってこれくらいのずれは生じるものなのでしょうか。細胞株とトランスフェクションした細胞でバンドのずれを経験された方などいらっしゃいましたらご意見お待ちしております。
 
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No.11589-8 - 2023/07/06 (木) 08:40:03 - 2ME
>[Re:1] ruraさんは書きました :
> このずれは何によって起こるのでしょうか。

多数のことが想定されます。
他のコメントと重複します。

1. 内在遺伝子と外来遺伝子の一次配列の違いによるもの
(1) そもそもの内在遺伝子の長さ > 外来遺伝子の長さ
(9kDaの差として、80アミノ酸程度、240塩基程度の違い)
・外来遺伝子にオルタナティブ・バリアントを使用してしまったとか、内在遺伝子の1st ATGは外来遺伝子の1st ATGよりさらに上流にある、など。

(2) 外来遺伝子の発現の際にスプライシングを起こしている。

(3) 外来遺伝子上の2nd ATGから翻訳開始してしまっている、あるいは終止コドンより前で終結してしまっている。

(4) 外来遺伝子産物がなんらかのプロテアーゼで切断されてしまっている。

2. 様々な翻訳後修飾の有無や違いによるもの

翻訳後修飾にも多数のものが知られています。その中には比較的大きな分子量のものを付加するものもありますし、SDS-PAGE上で大きな移動度の違いをしめすものもあります。

しかしながら、SDS-PAGEのゲルの選択が不適切であるために、わずかな移動度の違いが拡大解釈されてしまいかねないような実験をしている人も時折いるようです。質問者がそうであるとは断定いたしません。ただ質問者は、実験に供したSDS-PAGE(ですよね?)の濃度分子量範囲を非開示しておられるので何とも申し上げようがありませんが、たとえば広範囲の分子量をカバーするようなゲルを使用した場合、わずかな移動度の差が分子量計算上、拡大されてしまうことがあります。そこで16〜20%ぐらいの単純なゲル(すなわちグラジエントではないゲル)で、確認されてはいかがでしょうか?

3. 25kDaタンパク質を発現する細胞と、過剰発現させた宿主細胞の違い、培養条件の違いなど。

これ一つ取ってもいろいろなことが想定できるのですが、質問の書き込み内容からはわかりません。

まさかとは思いますが、別々のSDS-PAGEや別々のウェスタンを比較しているのではないですよね?もしそうであるなら、とりあえず、同一ゲル、同一メンブラン、同一条件で、SDS-PAGEとウェスタンを行うことをお勧めします。

> 低分子タンパクであれば修飾によってこれくらいのずれは生じるものなのでしょうか。

ないこともない、ということは言えます。
しかし、その結論に絞る前に、確認すべきことが多数あるように思います。

もし既に確認実験を行っていたのであれば、上記コメントんについてはご容赦ください。
そして、できるだけ確認済みのものを開示していただけると、我々も無駄なコメントをしなくて済みます。ご賢察ください。

(無題) 削除/引用
No.11589-7 - 2023/07/06 (木) 06:25:58 - 774
特異性の問題かなぁと言う気がします。
とりあえず過剰発現の16kDaと内在性の25kDaの画像を抗体メーカーに送って聞いてみてはどうでしょうか?
発現しないことがわかってる細胞が手元にあれば、それで確認してみるとか。

(無題) 削除/引用
No.11589-6 - 2023/07/05 (水) 18:28:33 - rty
当該タンパク質のwestern blottingのデータを掲載している論文等をサーベイしてみましたか。

種や組織や細胞のちがいでも結構かわることはたまにあります。あなたの使用している細胞はデータシートの細胞とおなじものですか。スプライシングバリアントとか。
データシートに出てるデータの細胞なり、組織でみてみましたか。

有色分子量マーカーはメーカーにより、あるいはまれにロットにより移動度が違う場合があります。異なる2社のメーカーを並列に流した時に、Aというメーカーの20KDaのバンドがBというメーカーの25Daのバンドより上に来るとか経験あります。メーカーに聞いたら、ええ、それは普通によくあることです、と言われました。

(無題) 削除/引用
No.11589-5 - 2023/07/05 (水) 11:40:09 - YK
低分子・高分子関わらず分子修飾によって計算上の分子量より大きくなることはよくありますね
修飾もリン酸化、糖鎖、ユビキチン化などありますし。

プラスミドのシーケンスや抗体、再現等は大丈夫ですよね?

私はそういう経験がないですが、過剰発現系は細胞ストレスとなったり修飾などの細胞内リソースが奪われたりするので、一度導入プラスミドを減らす(発現量を抑える)というのはありかもしれません。

(無題) 削除/引用
No.11589-4 - 2023/07/05 (水) 11:15:07 - TS
なんとなく25kDaは別のタンパクの気がしました。
過剰発現させると、16と25kDaの両方に出るのですよね。
内因性の発現量がとても低いということはないですか。
PCRとかしてれば何となく発現レベルは予測できるかなと。

(無題) 削除/引用
No.11589-3 - 2023/07/05 (水) 10:29:34 - おお
低分子だとバンドがそれくらいずれたとしても驚かないですね。

過剰発現と内在性のものでサイズが違ったという話も頻度が少ないですが聞くことがあります。

まあ指摘にありますが、特異的なバンドを見ているのかというところはできる範囲の実験などで結論を出しておくべきでしょう。

どのようなたんぱくかわかりませんがO-glycosylationはまだ否定できてませんよね。

(無題) 削除/引用
No.11589-2 - 2023/07/05 (水) 10:02:32 - み
どちらかが嘘物の可能性を考えますが。

そもそも推定分子量はどのくらいですか?
断片化されないなら推定サイズより小さく出ることはあまりなく、大きめに出ることはよくあると思います(あくまで一般的にですが。。。)
強制発現ベクターのシーケンスは確認されましたか?
データシート画像があっても嘘物であることはよくありますが大丈夫ですか?
25kDaバンドはknockdownで減少しますか?
強制発現C末タグ検出でのサイズは?
違う抗体での検出。
他者らによる論文の有無。
やるべき事はたくさんありますよね。

ウェスタンのバンド位置がずれる 削除/引用
No.11589-1 - 2023/07/05 (水) 09:52:05 - rura
ある目的タンパク(16kDa)があるのですが、市販の抗体の添付画像には25kDaにバンドが現れています。
実際に細胞株でウェスタンを行うと25kDaにバンドが現れます。
しかし、同タンパク遺伝子をトランスフェクションして過剰発現させた細胞でウェスタン行うと16kDaに過剰発現されたバンドが現れます。
このずれは何によって起こるのでしょうか。
グリコシル化についてはPNGaseFにて確認しましたがあまりバンド位置は変わりませんでした。
低分子タンパクであれば修飾によってこれくらいのずれは生じるものなのでしょうか。細胞株とトランスフェクションした細胞でバンドのずれを経験された方などいらっしゃいましたらご意見お待ちしております。

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