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(無題) 削除/引用 No.804-3 - 2011/10/28 (金) 17:25:49 - 留学したことないですが 私が電顕をしてたときは4%PFA（パラフォルムアルデヒド）＋ 2.5%GA（グルタルアルデヒド）/PBSを使ってましたよ。

(無題) 削除/引用 No.804-2 - 2011/08/21 (日) 12:13:24 - 組織 目的は電顕？それとも免疫電顕でしょうか？ それによってコメントも変わってくると思います。 ともかく気になるのは >４パーセントホルマリン（ホルマリン液よりPBSで薄めて作成） 原液ホルマリン=約38%のホルムアルデヒド液なので、10%ホルマリン＝約4%ホルムアルデヒド液となり、これが通常使われる固定液です。ホルマリンを4%になるように希釈したりしてませんよね？ また、ホルマリンの緩衝液はPBSよりもPB（リン酸緩衝液、pH7.4）の方が形態保持性が高いと言われています。 電顕は経験者がいないと難しい面がありますので、近くに形態学専門のラボがあれば相談に行かれるのが一番です。少なくとも、まずは基本的な技術書を一通り勉強された方がいいでしょうね。

マウスの脳　電顕の固定 削除/引用 No.804-1 - 2011/08/20 (土) 10:05:12 - マンゴ 電顕初心者です。 マウスの脳を用いて電顕を行っているのですが、 固定について悩んでます。 ４パーセントホルマリン（ホルマリン液よりPBSで薄めて作成）にて還流固定 して、４パーセントホルマリンにて１時間つけて、凍結切片を作ってます。 そして、前固定として、二分の一カルウノフスキーを8時間 後固定として1%オスミウム固定を30分しています。 あまり、キレイな組織が見えません。 何を変えたら良いでしょうか？ また、エポン重合後に、スライドガラスの方に組織が残ってしまうことがあります。 何が原因なんでしょうか？ 何かお気づきになる点があったら教えてくださ。

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