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Biorad trans-blot turbo transfer system トピック削除
No.1067-TOPIC - 2011/10/14 (金) 10:50:49 - Trans Blot
ウエスタンでのセミドライトランスファーにBiorad社のtrans-blot turbo transfer systemを使用しています。precastのgelとpresetのメンブレン(バッファーも一緒にパックされています)を使うと7分間で100%(完璧だとおもいます)トランスファーされるのですが、自前のgelとメンブレンでは著しく効率が落ちます。いろいろバッファーやトランスファーの時間、電圧等試しているのですがうまくいきません。ご経験のある方、コツなどあれば紹介していただけると幸いです。
 
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mon様 ありがとうございます 削除/引用
No.1067-12 - 2011/10/24 (月) 22:27:35 - 蝉
 mon様フォローありがとうございました。
返信が遅れて申し訳ありませんでした。
貼り付けたURLがおかしくなっていたようですね。

>[Re:10] monさんは書きました :
> 最後の、.....(119-141).pdfまでいれると大丈夫ですよ。
>

Re 削除/引用
No.1067-11 - 2011/10/20 (木) 13:34:29 - Trans+Blot
ありがとうございました。気がつきませんでした。

(無題) 削除/引用
No.1067-10 - 2011/10/20 (木) 12:36:40 - mon
最後の、.....(119-141).pdfまでいれると大丈夫ですよ。

Re 削除/引用
No.1067-9 - 2011/10/20 (木) 10:16:28 - Trans+Blot
大変参考になりました。ところでミリポアのプロトコールのほうですがリンクをクリックするとエラーが出てしまいます。できればこちらのほうも見てみたいのでリンクのほうをもう一度出していただけると幸いです。

(無題) 削除/引用
No.1067-8 - 2011/10/19 (水) 22:33:07 - 蝉
わたしも参考資料を
http://www.millipore.com/markets/Immunodetect.nsf/files/pdfs/$file/Chapter%2003(119-141).pdf

ミリポアが出している転写に関する資料です。色々な転写緩衝液が紹介されており、またSDSやメタノールの役割も書いてあります。

高分子側の転写を上げるのであれば、SDSを増やす and/or メタノール濃度を下げる でコントロールして下さい。

また1.5mm厚のゲルなら(1mm厚の使用経験しかありませんが)、転写前に行う転写緩衝液にゲルを浸す平衡化時間は長くする必要がありそうですね。30分かそれ以上平衡化してみるのはいかがでしょうか?

10〜15V 定電圧の30〜45分ぐらいで、普段はセミドライの転写をやっています。

(無題) 削除/引用
No.1067-7 - 2011/10/19 (水) 15:53:52 - mon
セミドライトランスファーは、2液もしくは3液で行うのが効果的です。
以下に丁寧な操作法が載っていますので、参考にしてはいかがでしょうか。http://www.atto.co.jp/kotsu_series.html
ただし、7分という時間短縮となると???です。

Re 削除/引用
No.1067-6 - 2011/10/19 (水) 13:12:22 - Trans+Blot
ご指摘のとおり、セミドライは初心者で経験がほとんどありません。今まで一貫してwetでやってきました。以下が今回試した条件です。Wetのときは高分子の蛋白の転写は完全ではありませんでしたが、90Kdぐらいまではほぼ完璧でした。今回TransBlot購入にあたりprecast gel、preset membraneをサンプルとして渡され、あまりの転写効率のよさに愕然としました。しかしラボとしてコスト問題や学生の教育的な観点から、できれば自前のゲルとメンブレンでもある程度使える条件を確立したいと考えいろいろ試行錯誤している状況です。もし同様の考えでいろいろ試されている方がおられましたら、われわれの条件と比べていただいて助言をいただけると幸いです。


Hand Cast Gels


10% Gel (the amount is for two 1.5mm gels)

Resolving Gel Mix:
7.0 mL H2O (diH2O)
5.7 mL 30% Acrylamide (BioRad)
4.2 mL Lower Gel Buffer (0.75 M Tris, 0.2% SDS, pH 8.8)
94 uL 10% APS
15 uL TEMED

Stacking Gel Mix
3.6 mL H20 (diH2O)
0.886 mL 30% Acrylamide (BioRad)
1.5 mL Upper Gel Buffer (0.5M Tris, 0.4% SDS, pH 6.8)
27 uL 10% APS
8 uL TEMED

Running Buffer
BioRad 10X (25mM Tris/ 192 mM Glycine/ 1% SDS, pH 8.3)

Running Conditions:
140V for 50 to 70 mins

Transfer Membrane
PVDF from BioRad

Transfer Buffer
Towbin Buffer:
0.025M Tris
0.2M Glycine
0.01 SDS
20% Methanol

Transfer Conditions:
25V, 1.0A, 30 , 45, 60 mins

(無題) 削除/引用
No.1067-5 - 2011/10/16 (日) 11:28:22 - 蝉
>時間は15分、30分、1時間を試しました。TGXゲルと自前のメンブレン、自前のゲルとpresetのメンブレンといろいろ試していますが、なかなかです。


 Transblotの機械はセミドライの装置なので、30分とか1時間転写するというのは、通常のプロトコールじゃないですか?
 新しく機械を購入される前はタンク式(ウェット)で転写されていたのでしょうか?それともセミドライで転写をされていたのでしょうか?

 先の方のコメントを見ますと、TGXゲルの特徴と特別な緩衝液と転写膜がそろうと7分転写が可能になるのかもしれませんね。
 でも30分とか1時間なら自前ゲル−自前膜(0.45 or 0.2 ?)で普通に転写できると思うのですが。BioRad機械の問題なのか、あなたの経験不足による問題なのかが、明らかにされないと問題解決に繋がらないと思います。
 とりあえず、自作ゲルの濃度、緩衝液の組成、メンブレンの種類、転写の電圧(電流)などを記載されませんか?

Re 削除/引用
No.1067-4 - 2011/10/14 (金) 12:49:28 - Trans Blot
早速コメントありがとうございます。時間は15分、30分、1時間を試しました。TGXゲルと自前のメンブレン、自前のゲルとpresetのメンブレンといろいろ試していますが、なかなかです。皆様がためされたconditionのなかで比較的よかったものなど教えていただけると幸いです。または自前のゲルで比較的使えるものなどのレシピを教えていただけると助かります。

TGX-gel 削除/引用
No.1067-3 - 2011/10/14 (金) 12:22:10 - Hiro
Bio-radの方にTGX precast gelについてお話を伺ったところ、組成を調整してタンパクサンプルが抜けやすいようにしているそうです。
現に、Invitrogenのprecast gelと比較すると、gelの染色時に酢酸メタノールで収縮しやすいなどgelの構造・組成自体が異なるような印象をうけました。
従いまして、自作gelの場合、precast用の設定と比較してかなり長時間and/or高電圧を負荷しないといけないかもしれません。
どれくらいの時間と電圧の条件を試されたのでしょうか?

(無題) 削除/引用
No.1067-2 - 2011/10/14 (金) 12:16:05 - RadBio
あれはメンブレンとかが問題じゃなくてバッファーがみそだとバイオラッドの人が言っていました。組成が分からない限り自前で再現は無理かと。

Biorad trans-blot turbo transfer system 削除/引用
No.1067-1 - 2011/10/14 (金) 10:50:49 - Trans Blot
ウエスタンでのセミドライトランスファーにBiorad社のtrans-blot turbo transfer systemを使用しています。precastのgelとpresetのメンブレン(バッファーも一緒にパックされています)を使うと7分間で100%(完璧だとおもいます)トランスファーされるのですが、自前のgelとメンブレンでは著しく効率が落ちます。いろいろバッファーやトランスファーの時間、電圧等試しているのですがうまくいきません。ご経験のある方、コツなどあれば紹介していただけると幸いです。

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