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(無題) 削除/引用 No.2592-7 - 2009/01/04 (日) 01:44:19 - M 申し忘れましたが、 BrdU染色は塩酸処理が気持ち悪いので、その必要がないInvitrogenのClick-iT EdU kitを使おうかと思っています。 今後ともよろしくお願いいたします。

ありがとうございます。 削除/引用 No.2592-6 - 2009/01/04 (日) 01:35:34 - M おお様、blott様、 ご親切にどうも有難うございます。

(無題) 削除/引用 No.2592-5 - 2009/01/03 (土) 16:35:47 - blott 核の中のものならあまり流出も少なそうです。 ただ、アルコールを飛ばすときに、あまり乾かしすぎないように するのがコツです。 液体は見えなくなって少しウェットな状態でSDSバッファーを加えれば ほぼ完全に溶けると思います。 完全に乾固すると苦労します。

(無題) 削除/引用 No.2592-4 - 2009/01/03 (土) 09:16:33 - おお あ、そうだ。アルコールの固定で見たいものが溶出したりしてないか はチェックした方がよさそうです。

(無題) 削除/引用 No.2592-3 - 2009/01/03 (土) 07:33:46 - M 早速のコメント、どうも有り難うございます。 実験の計画を立ててみようと思います。 これからもどうぞよろしくお願いいたします。

(無題) 削除/引用 No.2592-2 - 2009/01/03 (土) 06:58:06 - おお 論文をしらべたり、見たりしたわけではないですが、できるでしょうね。 TCAで処理後95%アルコールで洗って、ウエスタンする方もいますし、 そういう意味ではあまり問題なさそうです。

アルコール固定した細胞でウエスタン 削除/引用 No.2592-1 - 2009/01/03 (土) 06:48:43 - M お世話になります。 アルコール（メタノールかエタノール）固定してBrDUとDNA染色した細胞を、細胞周期ごとにソーティングした後に、ウエスタンブロッティングをしたいと考えています。脱水固定なので、ソーティング後に還元剤入りのＳＤＳサンプルバッファーでしっかりと煮れば出来そうな気がしますが、そういう論文を見かけません。どなたか経験のあるかた、いらっしゃいませんでしょうか？よろしくお願いいたします。

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