ウェスタン初心者です.
非常に基本的な質問で申し訳ありません.
培養細胞から抽出した50kDaくらいの核内タンパク質のウェスタンをしていますが、actin抗体でもバンドが全く出ません。
抽出法はPBS(-)wash後、10cmシャーレにlysis buffer (NP-40, protease inhibitor cocktail, phospataseT&U))を100ulかけ、on iceで5minおいてから、スクレイパーでかき取ってtubeに移し、5min x3 vortexし、95度 5min boilし、泳動します。
泳動:Tris/Glycin/SDS buffer 20mA→120V 約1時間位
転写:Tris pH8.3/glycin/MeOH(20%) ウェット式 0.2A 80min
blocking:0.2%/Tween/5% skim milk/PBS(ちなみにこの組成で4℃保存して使いま わしてます)
1次抗体:4℃ O/N (0.2%/Tween/5% skim milk/PBS)
2次抗体:r/t 1時間 (in 0.2%/Tween/5% skim milk/PBS)
detect:Western Lighting plus
手技もあるかと思いますが、思いがけない失敗などありましたら教えていただけるとヒントになるかもしれません.
他の人が同じようにやって成功している系なので、何が失敗なのかわかりません.
ちなみにposi conはありません.
actin抗体は新しいものです.
だいたいreporobeしてからactin抗体をかけます.
宜しくお願い致します. |
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